martes, 11 de febrero de 2020

Noticias y actualidad

El pasado Lunes 10 de Febrero se ha publicado en la prensa esta noticia…


Enlaces varios:
https://elpais.com/elpais/2020/02/10/ciencia/1581359329_317929.html
https://www.mundiario.com/articulo/sociedad/autorizan-modificacion-genes-40-embriones-humanos-cataluna/20200210230024175335.html

Os recomiendo que leáis en detalle esta noticia.

Embriones Humanos (La Vanguardia)

¿Por qué está relacionada con nuestro blog?
¿En qué está basada esta forma de edición génica que proponen en este proyecto?

Como toda investigación siempre es importante que conozcamos de primera mano las posibles repercusiones (aunque sean lejanas) de nuestra propia investigación.

Un saludo y Aupa CRISPR-team.
Nos vemos en breve.

martes, 4 de febrero de 2020

Preparando la nueva cita

Como ya os comenté, ya hemos decidido qué genoma investigar.
Se trata de una colaboración que tenemos con el grupo de la catedrática de Microbiología Carmen Amaro de la Universidad de Valencia.


Carmen es especialista en el estudio de la interacción patógeno/hospedador utilizando el sistema de Vibrio vulnificus y la Anguila como modelo.

Vibrio vulnificus (Sociedad Española de Microbiología)

El genoma que vamos a analizar, no está todavía publicado y vamos a buscar la presencia de sistemas CRISPR en dicho genoma. El aislado se denomina VV5.

La nueva sesión, la dedicaremos por entero al estudio de este genoma!!!!
Y recordaremos y ahondaremos en el estudio de la herramienta CRISPR-Target: 

Aupa equipo, ya estamos cerca.

Estas son las fechas clave en la Organización de nuestra investigación.

PIIISA 2019/2020 en la Estación Experimental del Zaidín
Fechas clave:

1ª sesión:      27/11/2019
2ª sesión:      29/01/2020
3ª sesión:      29/04/2020

Congreso en la EEZ: Miércoles, 13 de mayo de 2020
Congreso General: Viernes, 22 de mayo de 2020

¡¡¡Una nueva sesión adicional!!!  ¡¡¡Este mes Febrero!!!  ¡¡¡ nos espera!!!!


Vamos a entender como las bacterias (en este caso V. vulnificus VV5) luchan frente a los virus que las atacan…

Experiencias con el clone manager, y con crispr-finder y con crispr-target…

¡¡¡De nuevo la sensación de estar exhaustos!!! Y es que … ¡¡¡vaya proyecto!!!.

Momentos de la mañana del pasado miércoles 29 (I)

Pasamos de la sorpresa, a la contra-sorpresa, al cansancio, al no me entero de nada, al me entero de todo… y todavía nos quedan desafíos… aunque nos hacemos mayores… ¿no?

Momentos de la mañana del pasado Miercoles 29 (II)

Si repasamos mentalmente lo que hemos hecho, no parece mucho pero si parece mucho … . Así:
(i) Gracias al clone manager:
-Ya sabemos mirar una secuencia de DNA de muchas maneras distintas:
-Desde arriba (dirección 5’ 3’).
-Desde abajo cadena complementaria (y de nuevo dirección 5’-3’).
-Encontrar las verdaderas regiones repetidas y no. Su equivalente complementario.

Imagen 2: Herramienta “invert”

-Aprehender bien lo que significa las siglas ORF. Que dan lugar a cadenas de aminoácidos que permiten una identificación precisa de lo que tenemos entre manos.

Imagen 3: Herramienta ORF search….

(ii) Que en lo que a secuencia de ADN se refiere dos cosas nos definen un locus CRISPR:
-El tándem de las secuencias repetidas (con sus spacers!!!!).
-El conjunto de genes cas asociados!!!

Imagen 4: Determinantes genéticos que nos definen un locus CRISPR

Todo ello nos lleva a unos spacers concretos que son algo así como el record de infecciones que han tenido lugar en una determinada especie de bacteria.

La identificación de los elementos CRISPR se realiza mediante:
Crispr finder en sus dos versiones. Ello nos permite dado un genoma determinado, encontrar dónde se encuentran.

Tenemos cuatro genomas a “investigar”:

Genoma 1: Lactobacillus paracasei strain LC355 (In Atlas of Oral Microbiology, 2015)

Genoma 2: Saccharolobus solfataricus strain P1 (In http://www.sulfosys.com/sulfolobus-solfataricus.html // Federal Ministry of Educational Research (Germany).

Genoma 3: Thermococcus chitonophagus (Imagen obtenida por K.O.Stetter & R.Rachel, Univ.Regensburg).

Genoma 4: Thermodesulfovibrio yellowstonii (Henry et al. 1994 Arch Microbiol. Jan;161(1):62-9).

Os animo a que buceeis por internet y busquéis aspectos de la biología de estos microorganimos. De donde se han aislado, que características tienen, etc…
Como os digo, debemos de confirmar y entender que los genomas que vamos a estudiar contienen:
Lactobacillus paracasei strain LC355. Un array sin proteínas
Saccharolobus solfataricus strain P1. 8 arrays confirmados y 5 sistemas crispr distintos
Thermococcus chitonophagus. 8 arrays y 5 sistemas crispR
Thermodesulfovibrio yellowstonii 5 arrays y 5 sistemas crispr

Inicialmente hay que subir los genomas a esta base de datos:
https://crisprcas.i2bc.paris-saclay.fr/

Para después lanzarle la pregunta de dónde están sus sistemas crispr.



Probad los distintos genomas y comentad lo que sale. Preguntaros y recordar el cómo entre vosotros y a través del Blog. Practicad con el clone manager e identificar las regiones conteniendo estos sistemas…

Entradas más visitadas